Mikroskopia świetlna w badaniach komórki roślinnej

Mikroskopia świetlna w badaniach komórki roślinnej

Ćwiczenia

1 opinia

Format:

ibuk

WYBIERZ RODZAJ DOSTĘPU

 

Dostęp online przez myIBUK

WYBIERZ DŁUGOŚĆ DOSTĘPU

6,15

Wypożycz na 24h i opłać sms-em

12,45

cena zawiera podatek VAT

ZAPŁAĆ SMS-EM

TA KSIĄŻKA JEST W ABONAMENCIE

Już od 19,90 zł miesięcznie za 5 ebooków!

WYBIERZ SWÓJ ABONAMENT

Książka zawiera opis praktycznych ćwiczeń z "klasycznej" biologii roślin. Omawiane konkretne ćwiczenia wykonywane są z wykorzystaniem następujących technik mikroskopowych: kontrast fazowy, polaryzacja, fluorescencja, technika polaryzacyjno-interferencyjna, stereoskopia. Przedstawione są także podstawowe informacje dotyczące laserowej mikroskopii konfokalnej, cyfrowej obróbki obrazu, podstawy interpretacji obrazów mikroskopowych oraz zasada mikroskopii ciemnego pola i podstawy optyki w zakresie niezbędnym do poprawnego posługiwania się mikroskopem świetlnym.


Liczba stron120
WydawcaWydawnictwo Naukowe PWN
ISBN-13978-83-01-15223-9
Numer wydania1
Język publikacjipolski
Informacja o sprzedawcyRavelo Sp. z o.o.

Ciekawe propozycje

Spis treści

[].Podstawy optyki    1
[][].. Właściwości falowe światła    1
    1.. Polaryzacja światła    2
    1.3. Rozszczepienie światła    2
    1.. Dyfrakcja i interferencja    4
  2.Podstawy mikroskopii    6
    2.1. Budowa mikroskopu świetlnego    6
    2.2. Podstawowe pojęcia i wzory    7
    2.3. Zasady pracy z mikroskopem    8
    2.4. Mikroskopia stereoskopowa    12
    2.5. Mikroskopia ciemnego pola    14
    2.6. Określanie rzeczywistych wymiarów obiektów biologicznych    16
    2.7. Analiza błędów pomiarowych    18
  3.Mikroskopia kontrastowo-fazowa    20
    3.1. Budowa mikroskopu kontrastowo-fazowego    21
    3.2. Powstawanie obrazu w mikroskopie kontrastowo-fazowym    22
    3.3. Przykłady zastosowania kontrastu fazowego    23
      3.3.1. Obserwacje przyżyciowe protoplastu na przykładzie komórek cebuli    23
      3.3.2. Obserwacje nici Hechta w komórkach cebuli    26
      3.3.3. Obserwacje niebarwionych preparatów chromosomów    26
      3.3.4. Obserwacje programowanej śmierci komórki    27
  4.Mikroskopia fluorescencyjna    31
    4.1. Podstawowe terminy    31
    4.2. Budowa i zasada działania mikroskopu fluorescencyjnego    33
    4.3. Autofluorescencja    34
    4.4. Fluorochromy i białka zielonej fluorescencji    35
    4.5. Przykłady zastosowania mikroskopu fluorescencyjnego    37
      4.5.1. Fluorescencyjna metoda badania oksydoredukcyjnych właściwości żywych komórek z zastosowaniem błękitu Nilu i siarczanu błękitu Nilu    37
      4.5.2. Wykrywanie kalozy w tkankach roślinnych za pomocą błękitu aniliny    38
      4.5.3. Fluorescencyjna metoda wykrywania kwasów nukleinowych oranżem akrydyny    40
      4.5.4. Znakowanie filamentów aktynowych: rodamina–faloidyna    41
      4.5.5. Znakowanie mikrotubul    42
      4.5.6. Wykrywanie komórek ulegających programowanej śmierci na podstawie fragmentacji DNA – test TUNEL    48
      4.5.7. Fluorescencyjna metoda badania transportu symplastowego    51
      4.5.8. Lokalizacja auksyny w komórkach za pomocą GFP    53
  5.Mikroskopia polaryzacyjna    54
    5.1. Budowa mikroskopu polaryzacyjnego    54
    5.2. Teoretyczne podstawy badań w świetle spolaryzowanym    56
    5.3. Przykłady zastosowania mikroskopu polaryzacyjnego    58
      5.3.1. Obserwacje składników komórki przy skrzyżowanych polaroidach    58
      5.3.2. Analiza anizotropowych składników komórki z wykorzystaniem „gipsówki”.    60
      5.3.3. Wyznaczanie kąta ułożenia fibryl celulozowych w ścianie komórkowej    63
  6.Mikroskopia polaryzacyjno-interferencyjna    65
    6.1. Budowa mikroskopu polaryzacyjno-interferencyjnego    65
    6.2. Powstawanie obrazu w mikroskopie polaryzacyjno-interferencyjnym    67
    6.3. Przykłady zastosowania mikroskopu polaryzacyjno-interferencyjnego    70
      6.3.1. Określanie suchej masy jądra komórkowego – metoda jednorodnego pola z    70
  7.Informacje uzupełniające    75
    7.1. Laserowa skaningowa mikroskopia konfokalna    75
    7.2. Interpretacja obrazów mikroskopowych    77
    7.3. Obróbka obrazu mikroskopowego    82
    7.4. Zasady przygotowania preparatów mikroskopowych    85
      7.4.1. Wybrane procedury zatapiania i barwienia preparatów    90
    7.5. Roztwory i ich stężenia    93
    7.6. Pojęcie pH i roztwory buforowe    95
    7.7. Przykłady buforów    97
    7.8. Rodzaje wody używane w praktyce laboratoryjnej    101
    7.9. Pipety i zasady pipetowania    101
    7.10. Właściwe przedstawienie powiększeń dokumentacji zdjęciowej    103
    7.11. Tabele    105
  8.Literatura    106
  Skorowidz    108
RozwińZwiń
W celu zapewnienia wysokiej jakości świadczonych przez nas usług, nasz portal internetowy wykorzystuje informacje przechowywane w przeglądarce internetowej w formie tzw. „cookies”. Poruszając się po naszej stronie internetowej wyrażasz zgodę na wykorzystywanie przez nas „cookies”. Informacje o przechowywaniu „cookies”, warunkach ich przechowywania i uzyskiwania dostępu do nich znajdują się w Regulaminie.

Nie pokazuj więcej tego powiadomienia